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海州香薷耐銅性轉(zhuǎn)錄組學(xué)研究及其完整葉綠體基因組解讀

發(fā)布時間:2020-11-20 07:29
   海州香薷是我國南方銅礦床生長的一種耐銅植物,俗稱“銅草”,因為它在植物修復(fù)銅污染土壤中起著至關(guān)重要的作用,銅是一種重要的金屬。然而,大多數(shù)對海州香薷耐銅的研究還未涉及其銅脅迫下轉(zhuǎn)錄基因的動態(tài)變化,很少有研究從遺傳學(xué)和轉(zhuǎn)錄組的角度分析和探討銅耐受性的相關(guān)機制。一方面,本研究利用轉(zhuǎn)錄組學(xué)技術(shù)探究海州香薷對銅的耐受性。研究組裝了海州香薷幼苗的根基因,在三種不同銅濃度(T1:10μmol/L Cu2+、T2:50 μmol/L Cu2+、T3:100 μmol/LCu2+)脅迫下處理7天后,以及對照組(CK)幼苗的根基因的轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù),從海州香薷的轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)注釋中得到58,525個unigenes。對差異表達基因的進行功能分析,包括海州香薷銅脅迫組間差異基因GO功能顯著性富集分析和Pathway顯著性富集分析。差異表達基因顯著富集的通路主要是與核糖體、吞噬體、氮代謝、角質(zhì)、木栓質(zhì)及蠟質(zhì)生物合成、細胞分裂素合成、泛醌和其他萜類化合物-醌生物合成、光合作用-觸角蛋白、光合作用、光合作用中的碳固定、α-亞麻酸代謝等代謝通路。這些代謝通路間相互聯(lián)系,協(xié)同作用。對照組相比,三個實驗組分別篩選出16、9、15個差異表達的銅相關(guān)金屬離子轉(zhuǎn)運蛋白基因。光合作用-觸角蛋白、光合作用、光合作用的碳固定以及α-亞麻酸代謝等差異表達基因顯著富集的KEGG通路與葉綠體密切相關(guān)。這些為后續(xù)研究提供轉(zhuǎn)錄組水平的基礎(chǔ)數(shù)據(jù)以及可能參與銅脅迫抗性的相關(guān)基因和通路。另一方面,本研究利用二代測序完成了海州香薷葉綠體基因組的從頭組裝,完整的海州香薷葉綠體基因組長度為150,761 bp(GC含量37.8%)。反向重復(fù)序列(IRs)25,572 bp,單拷貝區(qū) 17,473 bp(SSC)和82,144 bp(LSC),包含87個蛋白編碼基因、38個tRNA基因和8個rRNA基因。海州香薷葉綠體基因組中有30個長重復(fù)序列(LSR)和65個簡單重復(fù)序列(SSR)。通過對11種唇形科植物的葉綠體基因組進行了比較分析,唇形科植物IRs區(qū)序列保守性高于LSC和SSC區(qū)。系統(tǒng)發(fā)育分析表明,海州香薷在進化關(guān)系上與紫蘇屬更近。海州香薷葉綠體基因組完整序列分析也為其他超積累植物的基因組學(xué)和遺傳學(xué)方面的研究奠定基礎(chǔ)。
【學(xué)位單位】:浙江大學(xué)
【學(xué)位級別】:碩士
【學(xué)位年份】:2019
【中圖分類】:Q943.2
【部分圖文】:

技術(shù)路線圖,技術(shù)路線,轉(zhuǎn)錄組


用Illumina二代測序平臺,pair-endl50bp測序策略,獲得轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù),進而進行??后續(xù)數(shù)據(jù)分析。??本研究的技術(shù)路線如圖1.2所示。??野生海州香薷????^一?? ̄>??種I子?新鮮jh片??水培.銅脅迫處理幼苗?提。模危粒?_代丨丨lumina平臺,PE150測序??提。遥巍,二代丨lljmina平臺,PE丨50測序?髙通U數(shù)據(jù)??轉(zhuǎn)??轉(zhuǎn)錄纟j■數(shù)據(jù)??Perl,novoplasty?基??錄料組?甚差基?5差分典?”?因??^?裝?|?異因?男異備算?海州香裔完整葉綠體基因沮序列?組??-"I—藝—S巻?|?s?◎?qū)W??^?量?基量?路基?轉(zhuǎn)?因?學(xué)的唇?統(tǒng)??評?因估分0?|?組?分比形?t??\?f?I?ixt?析|?因?慧?析|??1?析?分子?傳?基其?4??獲得錮脅迫下海州香薷?|?k?、丨?1&?因他?化??轉(zhuǎn)錄組序列?銅耐性機制1?有奐的基因、?>-?--T?-分??代謝通路?'轉(zhuǎn)運蛋白?

組裝質(zhì)量,香薷


采取的數(shù)據(jù)過濾條件為(i)去除接頭污染的Reads;?(ii)去除低質(zhì)量的Reads;?(iii)??去除N比例大于5%的Reads。過濾得到的干凈數(shù)據(jù)(CleanData)(附圖1),本??實驗所測的12個轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)質(zhì)控后,其Q30均在94%以上(附圖2),測序堿基??分布無AT、GC的分離(附圖3)。因此,原始下機數(shù)據(jù)過濾后的干凈數(shù)據(jù)(clean??data)可用于轉(zhuǎn)錄本的組裝。??2.3.1.2轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)組裝及組裝質(zhì)量控制與評估??利用Trinity組裝上步得到的數(shù)據(jù),相關(guān)命令行見表2.2。組裝后得到的初步結(jié)??果分別進行組裝結(jié)果基本信息統(tǒng)計、比對率分析、均一性分析、準(zhǔn)確性評估、注??釋比例評估、嵌合體比例評估、核心蛋白比對率評估、注釋完整性評估等(相關(guān)??數(shù)據(jù)見附圖)。圖2.1A說明組裝的contig長度分布,組裝的N50長度為2,007bp?,??組裝的平均長度為1,280?bp;?2.1B顯示組裝unigene的長度分布,其中N50為??l,840bp;?2.1C表示測序的核酸序列的隨機程度即均一性。從該圖中可看出當(dāng)前測??序深度下,潛在轉(zhuǎn)錄本的均一性較好。圖2.1D說明過濾的數(shù)據(jù)中78.4%的數(shù)據(jù)映??射到了組裝的contig上,從以上數(shù)據(jù)可以看出本次的12個樣品轉(zhuǎn)錄組組裝質(zhì)量較??好

長度分布,長度分布


序列的似然函數(shù)的log值大于0;選。秱ORF中得分最高的;當(dāng)一個ORF完全??包含另一個,輸出最長的一個。對預(yù)測出來的ORF序列統(tǒng)計其長度分布,其結(jié)果??如圖2.2所示。通過上文描述方法在丨2個海州香薷樣品的imigene尋找ORF,共找??到33,853條序列,長度從297bp到16,176bp不等,平均長度為914bp,其中N50??是?l,182bp,N90?是?429bp。??ORF?Length?Distribution??〇?J ̄9??min?length:?297??max?length:?16176??_?.?N50:?1182??N90:?429??〇)?〇?,?mean?length:?914??I?2????3??Z?:??§§?:??5????S*?\??10??〇?\??s?V??o?’??0?5000?10000?15000??ORF?Length??圖2.2?ORF長度分布??Figure?2.2?ORF?Length?Distributions??15??
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本文編號:2891155

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